• 游客
收藏 | 举报 2015-04-19 17:02   关注:242   回答:7

【求助】怎样筛选出稳转细胞株...

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【求助】怎样筛选出稳转细胞株

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  • 游客
举报 2015-04-25 01:01
我是用脂质体转染的,转染是成功的,每次都是筛选的时候失败,预实验得到的嘌呤霉素的浓度为0.26ug/ml,但是不同的细胞状态敏感度不一样,我会根据情况微调,加抗生素筛选的时候,按道理有荧光的细胞有抗性应该长的好,事实上是有荧光的细胞状态反而不好,没有荧光的细胞长的很快,这时候又不敢加大药物浓度,不知道怎么办。筛10多天的时候可以形成单克隆,我用96孔板稀释成单个细胞,基本上不能存活
  • 游客
举报 2015-04-30 11:36

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流苏紫光
我是用脂质体转染的,转染是成功的,每次都是筛选的时候失败,预实验得到的嘌呤霉素的浓度为0.26ug/ml,但是不同的细胞状态敏感度不一样,我会根据情况微调,加抗生素筛选的时候,按道理有荧光的细胞有抗性应该长的好,事实上是有荧光的细胞状态反而不好,没有荧光的细胞长的很快,这时候又不敢加大药物浓度,不知道怎么办。筛10多天的时候可以形成单克隆,我用96孔板稀释成单个细胞,基本上不能存活

......

1.转染时可以考虑将DNA线性化后转入。
2。事实上是有荧光的细胞状态反而不好,没有荧光的细胞长的很快,
这个时候要加药,直接杀死非抗性细胞。
3.筛10多天的时候可以形成单克隆,我用96孔板稀释成单个细胞,基本上不能存活
可以考虑下用其它的方法。克隆环,或是其它的操作。
  • 游客
举报 2015-04-21 14:44
请问现在进行的怎么样?我正好也要做稳转
  • 游客
举报 2015-04-20 20:18
香香要发奋lv
请问现在进行的怎么样?我正好也要做稳转
  • 游客
举报 2015-04-23 00:50
后面就是没有荧光的细胞药物也杀不死了,我都是让细胞形成单克隆之后,用滤纸或tip头挑几个细胞种在96孔板中,让它长起来,不过荧光还会丢失些,再挑几次就可以了
版主yj1984ren留言:
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  • 游客
举报 2015-04-22 04:29
可以用流式分选单克隆,效率高又节省时间
  • 游客
举报 2015-04-26 15:19

用荧光素酶基因标记肿瘤细胞步骤

哺乳动物生物发光,一般是将Firefly luciferase基因(由554个氨基酸构成,约50KD)即荧光素酶基因整合到预期观察的细胞染色体DNA上以表达荧光素酶,培养出能稳定表达荧光素酶的细胞株,当细胞分裂、转移、分化时, 荧光素酶也会得到持续稳定的表达。将标记好的细胞接种到实验动物体内后,当外源(腹腔或静脉注射)给予其底物荧光素(luciferin),即可在几分钟内产生发光现象。这种酶在ATP,氧存在的条件下,催化荧光素的氧化反应才可以发光,因此只有在活细胞内才会产生发光现象,并且发光光强度与标记细胞的数目线性相关。

我们采用慢病毒表达系统GFP(mCherry)和Luciferase2双标记表达细胞系,通过2A序列连接GFP(mCherry)和Luciferase2,可同时等量表达GFP(mCherry)和Luciferase2,便于体外观察和体内示踪;mCherry可用于体内示踪,与新一代Luciferase2结合,可方便的监测细胞在体内的生长和变化。

转染方法与标记过程的描述(慢病毒转染Hygromycin筛选):

(一) 质粒部分

1.酶切载体:pGL4.10(luc2)由酶切获得1400bp的luc2基因片断;EGFP和mCherry片段由PCR扩增获得700-800bp左右片段;pSin-hyg-T2A载体酶切线性化。

2.电泳和胶回收:上述酶切产物DNA电泳, TAKARA试剂盒胶回收,回收产物取少量电泳鉴定。

3.连接载体与目的片段:使用Invitrogen T4连接酶连接luc2、EGFP或mCherry片段和pSin-hyg-T2A线性化载体,连接使用20ul体系,25℃,10min。

4.转化:感受态菌One Shot Stbl3在冰上融化后,加入连接产物,静置25min后在水浴42℃,45sec热休克,后加入250ul无抗培养基225转摇菌1h,将转化的菌铺于有氨苄抗性平板37度过夜。

5.挑取单克隆:观察平板后挑取15个单克隆至含2ml氨苄抗性 LB培养基摇菌管中,255转摇菌6.5h。

6.小抽质粒与鉴定:使用碱裂解法小抽,质粒用25ul含RNA酶ddH2O溶解;酶切鉴定: 重组质粒用通过酶切鉴定。

7.荧光素表达鉴定: 重组质粒pSin-hyg-GFP/luc2(以下简称Gluc)或pSin-hyg-mCherry/luc2(以下简称Mluc) 转染293T细胞:DNA定量后,使用PEI转染Gluc或Mluc至24孔板已预铺的293T细胞中。转染采用脂质体法转染,试剂采用JetPEI (Polyplus公司)。两管EP管中分别加入50ul生理盐水,其中一管加入1ug量的质粒(DNA体积=1ug/DNA浓度),轻轻震荡混匀,再轻微离心;在另一管中加入PEI 2ul轻轻震荡混匀,轻微离心,然后把PEI管中的溶液加入含有的质粒管中,室温孵育20min。将脂质体包绕DNA的混合液加入需要转染的24孔内,37 ℃、5 % CO2条件下培养,8小时后换培养液。

8.报告基因检测:Passive Lysis Agent裂解细胞,加入荧光素酶作用底物,将转染质粒的细胞与阴性,阳性对照共同进行单报告基因检测。

9.质粒中抽:取1ml转染报告基因检测正确的菌液加入100ml氨苄抗性的LB培养基中摇菌过夜,使用Invitrogen试剂盒中抽,产物电泳鉴定,-20℃保存。

(二) 慢病毒包装部分

1. 质粒共转染细胞:转染前一天, 293T在10cm培养盘中的细胞达到90%,胰酶消化后,1:3传入新10cm培养盘中。转染时,细胞在培养盘中密度达到80%。采用脂质体PEI转染法使编码慢病毒包膜蛋白的质粒VSV G, Packaging Mix以及构建的Gluc或Mluc质粒15µg共转染。6h后换新鲜DMEM培养基。

2.提取病毒上清:转染48-72hours后,将含有病毒液的培养基转移到15ml离心管中,在低温4摄氏度条件下,3000rpm,离心10min去除片状沉淀的细胞碎片。

3.浓缩病毒:将病毒上清用0.45um滤器过滤至浓缩离心管中,2000rpm,4℃,15min离心。浓缩液收集于500µl离心管中,-80℃保存。

(三) 慢病毒感染&筛选

1.感染前一天(Day1),消化目的细胞并计数,将细胞铺于24孔板中(以便在感染前细胞达到30%-50%的汇合度),37°C过夜孵化细胞。

2.(Day2) 解冻低温保存的慢病毒液,并且制备1:2病毒稀释液200µl加入细胞中。

3.向每孔加入Polybrene达到终浓度6ug/ml,晃匀孔板,37度孵化过夜。

4.(Day3)移去含有慢病毒的培养基,加入500µl完全培养基。

5.(Day4)换液,加入300µg/ml Hygromycin(Sigma)来选择稳定感染的细胞克隆。

6.(Day4-7),每24h换液,300µg/ml Hygromycin(Sigma)来选择稳定感染的细胞克隆。

维持培养。

7.(Day8-12)细胞逐渐由24孔板传入6孔板、6cm盘和10cm盘中100µg/ml Hygromycin维持培养。

8. 目的细胞-Gluc/Mluc细胞系鉴定: 取5×104细胞,用Passive Lysis裂解液裂解,加入荧光素酶作用底物,将转染质粒的细胞与阴性,阳性对照共同进行单报告基因检测。GFP和mCherry表达通过荧光显微镜观察。