MCF-7/Tax

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更新: 2021-05-23
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货号: HX-207
是否是肿瘤细胞:
物种来源:
组织来源: 乳腺
数量: 大量

收到复苏好的贴壁细胞的处理方法:
1. 先从外包装盒拿出细胞瓶,在细胞瓶表面喷一层酒精,并小心去掉封口膜;
2. 在显微镜下观察细胞状态,并确定是否染菌,如有染菌,请立即拍照,并将细胞丢掉;
3. 将培养瓶置于 37°C,5% CO2的无菌培养箱中培养 4-6 小时;
4. 倒掉多余的培养基,留正常体积的培养基;
5. 重新将培养瓶置于 37°C,5% CO2的无菌培养箱中培养过夜
6. 第二天传代。
收到冻存细胞的处理方法:
1.37°C 水浴预热培养基;
2.从液氮中取出细胞迅速放入37°C 水浴快速解冻(解冻后不要继续暖细胞);
3.在超净台中加入5ml 培养基重悬细胞,1000rpm 离心5min;
4.弃上清,加入5ml 培养基重悬细胞后转入 T25培养瓶中,轻轻晃匀;
5.置于37°C,5% CO2培养箱中培养(培养瓶盖没有透气孔的话,瓶盖不要拧太紧);
6.第二天,用新鲜的培养基给细胞换液后继续培养。
细胞传代
1.当细胞融合度达到90%以上时,给细胞传代;
2.37°C 水浴预热培养基;
3.在超净台中,弃培养基,加入2-5mlPBS 清洗细胞后,再加入1ml 胰酶消化细胞;
4.显微镜下观察到细胞变圆,有细胞开始脱离瓶壁时,加入5ml 培养基终止消化;
5.用移液器轻轻吹下瓶壁上剩余的细胞,并轻轻吹打将细胞吹散;
6.将细胞移入离心管中,1000rpm 离心5min;
7.弃上清,加入15-20ml 的培养基重悬细胞后转入 T75培养瓶中或按适当比例传到 T25瓶中(确保细胞贴壁
后融合度在25-50%之间),细胞密度在1×104cells/cm2(2.5×105cells/T-25瓶),混匀细胞悬液,确保均
匀分布;
8.将培养瓶置于37°C,5% CO2的无菌培养箱中培养。
细胞冻存
1.37°C 水浴预热培养基;
2.消化细胞后给细胞计数:
1)洗净晾干血小板计数板和盖玻片,将盖玻片完全覆盖计数区;
2)充分混匀细胞,取少量(0.1-0.5ml)细胞悬液与等体积的染色液台盼蓝混合,移液器吹吸混合均匀,用移液
器取20ul 混合液从盖玻片两端(与中间凹槽平行的两端)分别打入细胞,以细胞悬液刚好浸湿盖玻片为佳;
3)显微镜下,数四个计数区的总细胞数,无活性细胞染成蓝色,活细胞不被染色;
4)细胞密度=细胞总数/4×10000×2;
这里10000是不变的,因为计数的细胞是在体积为1mm×1mm×0.1mm 即10-4cm3计数池内,1cm3=1ml,将
四个计数区的细胞数除以4取平均数,乘2是补偿加等体积台盼蓝形成的稀释。
5)细胞活性=活细胞数/细胞总数×100%。
注:细胞密度高时,可调整细胞悬液和台盼蓝的比例,计数时乘以相应的稀释倍数即可。
3.当细胞密度达到传代密度且细胞活性在90%以上时,可以冻存细胞。
4.在超净台中将要冻存的细胞移入离心管,1000rpm 离心5min。
5.弃上清,用90%培养液+10%DMSO 的混合液重悬细胞,并调整细胞密度为1-3×106/ml。
6.将细胞悬液分装到冻存管中(1-1.5ml/管)。
7.将装有细胞的冻存管放入程序降温冻存盒,-20°C 放1-2h 后,-80°C 过夜,然后快速转移到液氮中。